28s RNA条带在多少bp
来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/05/29 14:01:13
很小的,修芬兰相当于300BP,在不到一百BP左右?是一堆的,一看就能看出来的.提质粒提不好经常会有那东西的.
模板是什么?基因组么?两次用的模板是一批做的么?时间长的话模板可能会降解
蓝色条带分别是溴酚蓝和二甲苯青FF(请注意不是二甲苯氰).溴酚蓝在琼脂糖中的泳动速率约与长300bp的双链线状DNA相同,而二甲苯青FF的泳动则与长4kb的双链线状DNA相同.希望能够对你有所帮助.
sRNA文库指的是smallRNA么那就不止是miRNA了吧如果只是要miRNA两种方法都行吧试剂盒也只是用柱子把分子量大的RNA分离了再问:您的意思是只要提取的包括miRNA就可以是吧,试剂盒提取的
原来扩增的时候就有两条带,回收的时候(是凝胶回收吗?)可能因为产物浓度过大,导致两条带没跑开,让你一起切下来了(回收后电泳检测了没?),所以连接后有两种克隆.至于说为什么会出现两种克隆,要具体问题具体
别人给的质粒,第一要做的是转化保种啊,别人给那点哪够分析.转化完了自己抽质粒分析.质粒直接跑电泳理论上是三条带,要想分析建议做单酶切再电泳.再问:又做了一次,拿个质粒菌做阳性对照也都没有提出来。不知道
与胶琼脂糖的浓度是有关系的,还与DNA的性质(单链还是双链)有关.在0.7%、1%、1.4%、2%的琼脂糖凝胶电泳中,溴酚蓝的迁移率分别与1000bp、600bp、200bp、150bp的双链线性DN
最好重新在反转录了,因为可能你的基因已经被你两次反转录富集了.虽然actin只有一条单带,但是你的PCR反应的循环数未知道,带的亮度也未知.
因为这两种RNA的相对含量啊亲.那两条带一条在3.8kb,一条在2kb,都是rRNA的一部分,本来的相对含量大概就是1:2.另外,要达到这两条带1:2的比值比较难,只要最下面弥散的带不多质量就还可以,
约30对染色体,24亿碱基
500左右
1、引入动量项2、变尺度法3、变步长法具体怎么做,网上都有相关资料,公式比较难打,只能写到这个份
首先试剂应该没有问题,现在连作为marker的基因都扩不好,那么一个是你的引物有问题,另一个就是反转录出问题了.遇到这样的问题应该一步一步的排除.首先确定反转录没有问题,一般的鉴定办法是扩增marke
用dl2000marker的话,在750bp(从上往下第三条带)和1000bp(第四条带)之间,
可能是菌的基因组DNA,不过基因组DNA是很大的,不只2k还有可能呢,是引物特异性不好,从转入质粒上克隆出了你的目的片段,但从菌基因组或者质粒序列上扩出来一个非特异
非特异性扩增.建议试试:1提高退火温度,或加点DMSO2重新设计引物3做分段PCR,再连起来4全基因组合成
这就是特异性不好,建议做如下改进:1,控制好RNA提取过程,尽量减少RNA降解和基因组DNA的混入;2,严重怀疑你的模板量过高,把模板稀释10-1000倍的梯度试试;3,做二阶段温度pcr,先用稍高退
首先明确一个问题,你的这个酶切位点在这个质粒中是唯一的吗,也就是说你只想把这个质粒切开吗?看你的结果好象这种可能性大些,那样我觉得最有可能是梅切不完全,即切开的线形质粒会比未切开的质粒跑得慢但两条带很
没明白……cDNA作为互补DNA,就是以mRNA为模板通过RT-PCR合成得到的.所以,PCR产物在核酸电泳EB染色之后应该显示cDNA条带才对.你若问什么没得到这样的条带,那么很可能是你引物设计的问