感受态菌为什么测OD 值

紫外分光光度计.微生物OD值是反映菌体生长状态的一个指标,OD是opticaldelnsity（光密度）的缩写,表示被检测物吸收掉的光密度.通常400～700nm都是微生物测定的范围,需要用紫外分光光

1感受态细菌细胞经过处理,更容易吸收外界DNA.2非感受态细菌也能被转化,但效率非常低.

在CaCl2溶液中,细菌细胞会发生膨胀,同时Ca2+会使细胞膜磷脂双分子层形成液晶结构,促使细胞外膜与内膜间隙中的部分核酸酶解离开来,离开所在区域,诱导细胞成为感受态细胞同时Ca2+能与加入的DNA分

楼上别扯了,那是为了让细胞膜流动性降低,利于DNA的结合,同时使细胞暂停生长,维持在对数生长期的高活性!

这个波长其实只是针对浊度,而分光光度计在600nm处对浊度的反应比较灵敏.测吸收峰的实际意义并不大,比如LB摇瓶培养过夜的大肠杆菌,其实在400多nm处的吸收最大,但那很可能是培养液的吸收峰,我问过某

OD不就是吸光度吗?、你说的是不是OD和透光率啊?透光率的定义为：T=I/I0IO是出射光强度”比尔-朗伯定律说明,吸光度为：A=ALCA:是吸收系数,与吸光材质的性质有关L:光在样本中经过的距离C:

应该是保持内的渗透压,保持细胞的正常形态,因为na和cl是细胞物质运输的重要离子

大肠杆菌多用LB来培养,培养液黄色浑浊,在OD600时有最大吸收,所以选择600nm的波长来测再问：那参比对照呢再答：参比对照当然是空培养基为好，消除黄色培养基的影响，用纯水的话，会测高0.05左右，

一般测OD值,值得范围严格来说要在0.2-0.7之间才是和浓度成线性关系的,如果超过了0.7（低于0.2的情况暂不考虑.）,则需要对样品进行稀释后再进行测定,如果还是超过0.7则继续调整,直到落入范围

首要问题就是操作是防止污染,因为这个是最容易影响感受态制作的因素.其次,就是悬浮沉淀的过程,一定要轻轻悬浮,最好轻摇悬浮,如果用移液器,把枪头前面剪掉一部分,然后再吹,这样吹的比较柔和.其他的,应该没

没有.

0D到5不算浓啊.一般大肠杆菌OD要到十几以上才进入衰退期.0D=5时候菌还是处于对数生长中期的.

对质粒,双链DNA:1OD(260)=50μg/ml

这问题要详细讲起来牵涉到很多其他概念,不知道你的基础如何,我试着归纳一下主要原因吧先回答第二个问题,用对数期细菌因为对数期细胞生长旺盛,新生细胞壁薄,细胞膜通透性好,外源DNA容易进入,同时意味着各种

感受态制备时不是一定要挑单菌落,可以在活化好的平板上划一条线挑菌去小摇.操作时只要保证无菌就可以.另外,补充二楼的转化后挑菌：一定要挑单菌落,而且要利索,不能沾到周围培养基上的空白地方,因为如果不小心

你是用多少nm测的啊?用什么做的空白.如果肉眼很混,OD绝对不止这个的.这个信息量不够的,你追问吧.生长后期OD下降很正常,因为有部分菌体自溶了.再问：用的600nm测的，开始用的细菌培养液YEB做空

你要扩大的是质粒不是PCR片段,直接PCR哪能扩那么大的质粒啊,而且质粒还是环形的,怎么做PCR,所以当然是摇菌啦再问：酶切后去PCR，2kb以内的质粒应该是没问题的吧？不过确实挺麻烦再答：哪有2KB

分管光度计后边有个按钮打开开关它的波长会自动停在500那里等到波长此案时为500时,静止20分钟,20分钟以后,按goto按钮,设定波长,然后按ENTER键,将比色杯放入,当显示在R时,是空白对照,必

原核细胞正常状态不会主动吸收质粒载体,在感受态时细胞膜通透性增加,通过热击或电穿孔技术使载体进入细胞

第一,质粒转化感受态细胞时,只需要一定量的质粒完成转化即可,因此没必要使用高浓度的质粒.第二,质粒是环状的,浓度过高会使得发生断裂,聚集等.第三,浓度过高,溶液比较粘稠,不利于扩散.